lunes, 1 de diciembre de 2014

Viaje a Ixtlán de Juárez

Nosotras, alumnas del C.B.T.I.S. 26 del 3° semestre grupo "R" de la especialidad de "laboratorio clínico" en este semestre realizamos una actividad en la materia de"Parasitología". Esta actividad consistió en visitar una comunidad la cual fue: "Ixtlán de Juárez", para analizar las muestras de heces fecales de niños de una primaria. Esto fue con la intención de observar parásitos para que nosotros como estudiantes alcanzáramos la competencia que nos pedía esta materia que es la : "Identificación de Microorganismos con base en Técnicas Parasitológicas". 
El día jueves 23, fuimos al área de laboratorio para empaquetar nuestro material necesario que ocuparíamos en la comunidad haciéndonos responsables de nuestro microscopio por equipo, posteriormente el día viernes 24 de Octubre partimos de la escuela a las 5:00 a.m. e un autobús que ya habíamos contratado con anticipación, llegando a la comunidad a las 6:30 a.m, en ese momento nos instalamos en un espacio que nos proporcionaron, ya que dias anteriores los representantes de equipo fueron a dar una platica a los padres de los niños de la primaria para que ellos estuvieran informados de lo que íbamos a realizar.
Más tare al ver que no nos llegaban muestras, algunos compañeros salimos a las calles a informar que nosotros estábamos recibiendo muestras para analizarlas para las personas que gustaran llevárnoslas nosotros gratuitamente les realizariamos su diagnostico.
Analizamos las muestras con el método de: "Coproparasitoscópico directo " y a las muestras positivas con el "método de Faust".

EXAMEN COPROPARASITOSCóPICO

El examen coproparasitoscópico es uno de los estudios de laboratorio que se pueden hacer para analizar las heces fecales, en particular este estudio se utiliza para identificar anormalidades correspondientes a infecciones parasitarias.
El tipo de muestra recogida dependerá de la especie y forma del parásito sospechado. El conocimiento del ciclo vital del parásito ayuda a determinar el tipo, cantidad y frecuencia de los especimenes necesarios para el diagnóstico.
Para el estudio se requiere de que se recolecte una muestra de heces fecales en un frasco limpio de vidrio con tapa de rosca. No se deben mezclar las heces con orina o con ningún otro líquido como agua de la taza del baño.
El estudio se puede hacer con una sola muestra de heces fecales (examen coproparasitoscópico simple), este estudio simple es suficiente cuando la evidencia es tal que con una sola muestra se logran identificar gran cantidad de parásitos. Sin embargo la mayor parte de las veces es mejor solicitar un examen coproparasitoscópico seriado que consiste en evaluar 3 muestras de heces fecales, una cada día.
La muestra de heces fecales debe de recolectarse de preferencia en la mañana unas horas o minutos antes de llevarla al laboratorio, y de no ser posible, en la noche anterior y refrigerarla en el recipiente en el que se recolecto. La cantidad de heces no debe de ser mucha, generalmente con una pequeña muestra (100 grs.) es suficiente. El frasco debe cerrarse herméticamente y no exponerse a calor extremo.
Las muestras no deben recogerse durante 1 semana si el paciente ha estado tomando materiales que dejan residuos cristalinos, como compuestos antidiarreicos, antiácidos, bismuto y bario, Además los laxantes a base de aceites, como la parafina, pueden interferir en los exámenes. Los antibióticos y los medios de contraste pueden disminuir la cantidad de organismos, particularmente los protozoos, en las heces durante 2 a 3 semanas.
El análisis de las heces e hace primero de manera macroscópica, evaluando consistencia, color, aspecto, presencia de moco, sangre, parásitos, etc.
Se toma la muestra, se mezcla con yodo de lugol y se observa al microscopio para la identificación de células inflamatorias, presencia de glóbulos rojos, y sobre todo para identificar huevos, quistes o parásitos microscópicos. Otra muestra se evalúa en fresco para identificar parásitos móviles.
En caso de no identificar parásitos en el primer examen se debe examinar las muestras obtenidas cada 2 a 3 días.
Muchas infecciones parasitarias pueden pasar inadvertidas, a menos que se estudien con tinciones permanentes especiales.
El examen coproparasitoscópico es un procedimiento rutinario en el laboratorio clínico. Su utilización es fundamental en la caracterización de algunas patologías. Su empleo dentro de la enseñanza de la salud pública para los futuros químicos clínicos es una nueva estrategia que haga participe al profesional con las necesidades de salud de su población. El objeto de esta investigación fue que los alumnos logren identificar a través de estudios coproparasitoscópicos la incidencia de parasitosis.
  
 COPROPARASITOSCÓPICO DIRECTO

OBJETIVO:
Conocer la importancia del diagnostico del laboratorio de las enfermedades parasitarias de igual manera identificar las diferentes formas parasitarias mediante la observación microscópica.
 FUNDAMENTO:
El método coproparasitóscopico directo es el mas antiguo que se conoce y fue el primero. Utilizado por Antonio Van Lewenhooke en el siglo XVIII observando trofosoitos de Giardia Lambía.
Un examen coproparasitoscopico es el estudio de material fecal para la búsqueda e identificación de formas parasitarias. Puede ser cualitativa o cuantitativa.
En este estudio, el material fecal mas utilizado es el recién obtenido por expulsión natural del paciente, ya sean bien formadas o ecuaciones diminutas en consistencia con moco o sangre. Este método es de gran utilidad para la detección en fresco de trofozoitos de Entamoeba histolitica, Giardia lamblia y Balantidium coli. En la suspensión teñida con lugol se puede identificar con facilidad quistes de protozoos.
· Este examen en fresco es sencillo, rápido y económico, pues requiere poco material.
· Es excelente para la búsqueda de trofozoitos y protozoos.
· Es eficaz para la búsqueda e identificación, de quistes, huevos y larvas.
 Sin embargo la muestra utilizada es muy pequeña y poco representativa.
Los montajes en solución salina tienen la ventaja de que retienen la movilidad de los trofozoitos sin embargo es difícil la observación de las estructuras internas pues con frecuencia son poco definidas. El yodo se emplea para detectar las estructuras internas de los parásitos presentes, pero inmóviles trofozoitos.
MATERIAL:
       · Portaobjetos
· Cubreobjetos
· Pipeta Pasteur
· Vaso de precipitado
· Microscópico
SUSTANCIAS:
· Sol. fisiológica al 0.95
· Sol.de yodo.
MUESTRA BIOLOGICA:
Heces fecales frescas.
PROCEDIMIENTO:

1.- Sobre un portaobjetos se coloca una pequeña porción de material fecal.

2.- Se coloca un gota de solución fisiológica.


 3.- Se coloca el cubreobjetos.


4.- Observamos sin teñir.
 5.- En otro portaobjetos limpio se repite el mismo procedimiento pero ahora se tiñen con la tinción de yodo.


6.- La observación se hace siempre con el objetivo seco débil 10x y con poca luz, al encontrarse con estructuras sospechosas, se observa con el objetivo seco fuerte 40x.



NOTA
Es importante que los frotis no sean densos, si no transparentes. Y que se haga la observación con diferentes muestras.
Tras la observación de los trofozoitos se utiliza la tinción de yodo que tiñe quistes y destaca sus de talles. Los trofozoitos mueren y se hacen identificables.

¿QUE ES UN ANALISIS COPROPARASITOSCIPICO?

Es un estudio prescrito bajo sospecha de presencia parasitaria, larvas, o huevos de diferentes familias de helmintos, amebas, tenias y protozoos.
El médico ordena este estudio cuando el paciente presenta:
  • Diarrea 
  • Gases 
  • Dolores o cólicos, etc.

    Cuando los parásitos se alojan en el aparato digestivo, una proporción de ellos, o las larvas, o los huevos... son eliminados con las heces.
    Como la cantidad que se elimina en cada defecación puede ser variable, y si hay poco número de parásitos en el intestino, lógicamente también serán escasos en las muestras que se tomen, no siempre que una muestra sale negativa se puede descartar la infección. Por eso, normalmente se toman tres muestras de heces, en tres días distintos. De esta forma se confirma la infección.

    Niños: Se recoge una muestra de una sola deposición con un hisopo estéril y se introduce en un frasco de las mismas condiciones. Una vez recogida la muestra se mantiene a temperatura ambiente hasta el momento de entregarla al laboratorio. En el laboratorio pueden realizar este procedimiento en bebés o niños muy pequeños.

    Este examen es prescrito para saber si se tiene algun parasito, el coproparasitario consiste en tomar una muestra de excremento en un contenedor limpio y esteril, luego en el lababoratorio guadalupe se incuba con una solucion salina, se lava y se ve al microscopio en busca de huevecillos, amebas, y signos de infecciones (leucocitos) también se busca sangre oculta en las heces o visible en estos casos se pueden deberse a estreñimiento.
EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO " TÉCNICA DE FAUST"

Este es el método más usado y efectivo, en este se precipitan los parásitos por centrifugación después de haber filtrado la muestra. Este método se utiliza solución de Zn, cuya densidad específica es de 1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos: Necator1.055, Tricocéfalo 1.150, Ascaris fértil 1.110 y facilita que los huevos livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se concentren y floten.
La concentración adecuada aconsejada es la que usa como reactivo una solución acuosa de sulfato Zn al 33% con una densidad al 1.180. El agua utilizada diluye y lava la materia fecal. El filtrado con gasa doblada y evita que los detritos gruesos traspasen las paredes, la centrifugación enriquece en delgada película la superficie del líquido centrifugado con los huevos livianos de algunos helmintos.
Material
  • Aplicador
  • Porta objetos
  • Cubre objetos
  • Tubo de ensaye
  • Asa de platino
  • Gasas
  • Gradilla
  • Centrifuga
  • Embudo
  • Vaso de presipitados
  • Mechero
  • Solucion de lugol
  • Sulfato de zinc
Procedimiento
  1. Mezclar bien una porcion de materia fecal para preparar una suspension homogenea con 1 a 2 g de materia fecal en 10 ml de agua destilada.
  2. Filtrar la suspensi a traves de una gasa doblada en cuatro, sobre un tubo de ensaye, ayudandose con un embudo pequeño.
  3. Centrifugar a 2500 rpm por 1 min.
  4. Decantar el liquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Resuspender el sedimento.
  5. Repetir el procedimiento 2 veces hasta que el liquido sobrenadante este listo.
  6. Decantar nuevamente el liquido sobrenadante remplazandolo por igual, cantidad de solucion de sulfato de Zinc al 33%. Mezclar bien la solucion con el sedimento. centrifugar durante un minuto a 1500rpm.
  7. Tomar de 3 a 4 gotas de las prticulas que flotan en la superficie del liquido, colcarlas en un porta objetos  y mezclar con 1 o 2 gotas  de lugol, colocar un cubre objeto.
  8. Examinar la muestra.   


































Esta práctica de viaje  Ixtlán estuvo bien organizada en nuestro equipo ya que nos organizamos muy bien y de esa manera pudimos trabajar armónicamente, no tuvimos ningún problema com equipo devido a nuestra buena organización.
Ésta experiencia ns dejo mucho aprendizaje como personas y tuvimos que estudiar mucho antes para realizar correctamente la práctica en la comunidad a la que asistimos.
DEBILIDADES;
en algunas ocasiones no nos ponemos de acurdo y perdemos tiempo muy valioso.
FORTALEZAS:
Cuando trabajamos organizadamente, todo nuestro trabajo lo realizamos correcta y organizadamente.


(Lister,2014)Examen Coproparasitario

Recuperado el 01 de Diciembre de 2014

(Elli,2014) Examen COPROPARASITOSCOPICO " TECNICA DE FAUST"


Fotografías:
 (Rodríguez, 2014)  (Barcelos, 2014)

domingo, 30 de noviembre de 2014

Prácticas en el laboratorio


        CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLóGICO       

        INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS Nº 26


                                     R




Asignatura: I.M.B.T.P. (Identifica Microorganismos con Base en Técnicas Parasitológicas)


Profesor: FAUSTO GÚZMAN ORTÍZ


Especialidad: Laboratorio   Clínico


Reporte analítico

                      

Práctica: método de Kato (variación Katz)


1.*¿Qué aprendí?

En esta práctica puede aprender muchas cosas, desde una nueva técnica que llevamos a cabo llamada método de Kato (variación Katz), la cual en lo personal me pareció muy padre además de parecerme una técnica muy fácil de realizar una de las cuales es económicamente accesible a lo que yo puede observar, el hecho de estar en una especialidad como esta significa aprender muchas técnicas para poder diagnosticar enfermedades que posiblemente encontremos en nuestros pacientes, algo muy importante para así poder tratarlos y darles un buen tratamiento. Aprender a realizar esta técnica fue muy didáctico ya  que por primera vez el profesor nos puso un video donde especificaba todo el procedimiento a realizar, mismo que nos permitió no tener confusiones y así poder llevar a cabo correctamente toda nuestra práctica. Con esta práctica pude aprender que para todo tipo de  condiciones en las que nos encontremos siempre encontraremos alguna técnica que nos pueda ayudar a diagnosticar a nuestros pacientes, ya que como leí anteriormente sobre esta práctica, encontré que esta se es una de las practicas con las que podemos diagnosticar a personas que viven en comunidades de lejana localización , ya que esta método te permite tener tu muestra ya preparada durante varios meses y así poder ayudar a las personas a las que se les diagnostique alguna enfermedad, mismas que no tengan los recursos necesarios para poder trasladarse a un laboratorio, ya que este método es de los más indicados para realizarse en el campo y así poder trasladar tu muestra preparada sin tener ningún inconveniente.

Una de las cuestiones en torno a mi equipo de las cuales aprendí fue que cuando de verdad mis compañeras quieren trabajar, ellas ponen todo de su empeño y realizan muy correctamente todo, mismo que no se llevaría a cabo sin la organización con la que trabajamos en cada práctica, aunque a veces no nos organizamos bien, esta práctica fue todo lo contrario ya que tuvimos una excelente organización misma que nos ayudó a no tener dificultades en torno a la práctica realizada, además de que personalmente me sorprendí con el trabajo que realizamos como equipo ya que como ya lo había mencionado, en otras prácticas no nos habíamos organizado bien y por esa razón no terminábamos a tiempo pero con esta práctica me puede dar cuenta de que cuando en realidad si nos organizamos bien siempre podremos sacar adelante nuestro trabajo y de esa manera tener una práctica muy exitosa y a la vez realizándola muy velozmente obteniendo grandes y correctos resultados.

Para concluir, puedo decir que esta práctica me dejo muchas cosas importantes desde saber cómo realizarla hasta el hecho de saber que con esta práctica puedo ayudar a muchas personas que necesiten ayuda, ya que tengo la suerte de estar en una especialidad en la cual estoy aprendiendo cosas muy padres, mismas que en un futuro me ayudaran para poder ayudar a las demás personas que necesiten ayuda médica, algo que es muy importante para mí para así poder brindarles la mejor ayuda posible respecto al problema que se les pueda diagnosticar.

2.*¿Cómo lo hice?

1._Se extendió un pedazo de papel periódico donde íbamos a trabajar y Daniela colocó  los 41.7 mg aproximadamente de heces fecales con un palito de madera.


2._Mientras tanto Pamela aplastaba las heces con la tela

 metálica la cual sirvió de colador para las heces.    
                 

 2)             (Barcelos, 2014)





3._Las heces que se “colaron”  mi compañera María José las tomó con la abate lenguas y las colocó en el portaobjetos, mismo que ya tenía el templete que en este caso utilizamos un trozo de fomi con una perforación circular en el centro.

4._María José colocó sobre este las heces fecales rellenando el centro del fomi mismo que se encontraba sobre el portaobjetos.
5._Miriam coloco el celofán que se había remojado
durante 24 hrs. posteriormente con glicerina mismo
que tomo con unas pinzas sobre la muestra de
heces fecales. 
5)                   (Barcelos, 2014)

6._Miriam coloco el celofán uniformemente por toda la muestra aunque como tenía mucha glicerina pues ahí fue donde hubo un poco de problemas ya que no se podía extender el celofán ya que se encontraba doblado a la mitad por la glicerina pero después todo se pudo resolver.

6)                   (Barcelos, 2014)

7._Karen presiono la muestra para así poder
extender las heces por todo el cuadro de celofán.



8._Mi compañera Karen de igual manera con el papel absorbente retiro lo sobrante de la muestra


 al mismo tiempo que hizo presión sobre la muestra.

9._Tuvimos que dejar reposar la muestra durante 45 minutos para poder observar los resultados, dejando la muestra libre de insectos para que no se contaminara, esperando ese tiempo para que la muestra se aclarara y se pudiera observar.





10._Observamos la muestra
 en el microscopio, acción que yo realice
 junto con mi compañera Berenice. 
                                                       10)(RODRIGUEZ,2014)






11._Finalmente esto es lo que observamos en

 el microscopio lo cual dio negativo al examen
de laboratorio que le realizamos a nuestro paciente
 a través de la técnica de “Kato Katz”.                                                    
                        
11)(RODRIGUEZ,2014) 
                                                                               
Por último reportamos nuestros resultados los cuales fueron los siguientes:
Laboratorio: “Barlosa RMP”
Nombre del paciente: Rosario Berenice Rodríguez Cruz
Edad: 16 años              Género: Femenino
Tipo de muestra: Heces fecales
Técnica de “Kato Katz”
-Examen macroscópico:
Heces fecales con olor característico, de acuerdo a la escala de Bristol, heces de tipo 2 color café marón.
-Examen microscópico:
A la paciente se le encontró con estado “negativo” respecto a la posibilidad de tener Taenia sp e Hymenolepis nana.
3.*¿Qué problemas tuve?
En el equipo no tuvimos ningún problema con la práctica ya que como el profesor nos puso un video de como teníamos que realizarla pues no hubo tanto problema, de igual manera con la organización de nuestro equipo ya que como tuvimos una buena organización y yo como jefa del equipo repartí cada una de las actividades que iba a realizar cada una y de esa manera apurarnos sin dificultades, aunque ya en la realización de la misma, mi compañera Miriam tuvo problemas para poder colocar el celofán ya que como tenía mucha glicerina pues no se podía tomar y colocar sobre la muestra y como estaba doblado a la mitad el cuadrito de celofán pues fue ahí donde hubieron problemitas, nada grave pero hizo que nos atrasáramos un poco en la práctica.
4.*¿Cómo lo resolví?
El problema del celofán, mi compañera Miriam lo pudo solucionar con las pinzas que pedimos mismas con las que se tomó el celofán aunque le pudieron servir para poder desdoblar el celofán y poder colocarlo correctamente en nuestra muestra, mismo que no se hubiera podido llevar a cabo sin la ayuda de cada una de las integrantes del equipo.
 PASOS:



                                                                                                                                
   7)         (Barcelos, 2014)                              

 8)                   (Barcelos, 2014)      



  
9)                   (Barcelos, 2014)      

10)                   (Barcelos, 2014)
      
11)                   (Barcelos, 2014)      






Práctica: método de Baermann (coproparasitocópico)



1.*¿Qué aprendí?

     
En esta práctica se aprendió a realizar un estudio coproparasitoscopico por medio de la técnica de “Baermann”, además de la forma correcta como usar una bitácora y registrar resultados del estudio del paciente para ver qué es lo que tiene, isimos esa técnica para ver si no tenía una larva en el microscopio usamos los objetivos 10 X y 40 X .Es una técnica muy buena para identificar larvas en heces fecales .Esta técnica permite una buena concentración de las larvas vivas strongyloides ,partiendo de un volumen grande de heces, Es demasiada engorrosa para ser empleada como técnica de rutina ,pero es excelente para constatar los resultados del tratamiento. Existen diferentes modos de montarla, con igual resultado. Pero tuvimos que consultar con l libro si en algo estábamos ml pero todo nos salió bien y es una nueva técnica que aprendimos, esta práctica más adelante nos servirá para consultar alguna duda y es una buena técnica nueva que isimos y tuvimos que consultar en el libro lo que necesitábamos para la práctica y en compañerismo colaboramos todas para ser la practicas y nos sirvió de algo aser esta práctica para identificar larvas para ver si está bien el paciente o tiene algún parasito.





2.*¿Cómo lo hice?


1.Le pedimos al paciente que tomara la muestra del tamaño de una nuez en ayuna
1)(García, 2014)



2. Se ponen 5-10 grs de heces en el caso de pequeños y se preparan fragmentos cuadrados de gasa donde se colocan la muestra, doblándose la esquina para formar un saco cerrado. (Pamela)  
2)(García, 2014)



3. Se le pone un palito de madera en la gasa amarada con las heces fecales (Pamela)
3)(García, 2014)


4. La gasa con heces fecales son depositados e introducidos en el aparato de Baermann ,en él se coloca, en el extremo más estrecho ,un tubo de goma cerrado mediante una pinza de Hauffmann. (Mago y lucia)
                                                                                 4) (García, 2014)

5.Se cubre la muestra con agua templada y se deja durante (una hora) en el embudo .(Pamela)
5)(García, 2014)


6. Transcurrido ese tiempo, se abre la pinza y se recogen los primeros 10 ml de líquido en tubos de centrifuga.(Miriam y Bere)


6)(García, 2014)

7.Los tubos se centrifugan a 1500-2000 rpm durante 5 minutos(Bere) (García, 2014)


7)(García, 2014)

8.Se elimina el sobrenadante con ayuda de una pipeta Pasteur para n remover el fondo del tubo ,dejando únicamente 1 ml (Bere)


8)(García, 2014)

9.Se examino en el microscopio (Lucia) 

9)(García, 2014)




10. Resultado:

10)(García, 2014)



3.*¿Qué problemas tuve?


A)   TÉCNICA: Solo tuvimos problemas



B) TRABAJO EN EQUIPO: Todo bien no tuvimos ningún problema en el equipo todas colaboramos



4.*¿Cómo lo resolví?


A) TÉCNICA: Acomodando bien el celofán con las pinzas




B)TRABAJO EN EQUIPO: Dando opiniones








Por lo último reportamos nuestros resultados los cuales fueron los siguientes:

Laboratorio: “Barlosa RMP”
Nombre del paciente: Abraham 
Edad: 16 años                                          Género: Femenino
Tipo de muestra: coproparasitoscopico
Técnica de “BAERMANN”

Examen macroscópico:
Heces fecales con olor fétido, de acuerdo a la escala de Bristol, heces de tipo 2 café marón

Examen microscópico:

Al paciente se le encontró con estado negativo respecto a la posibilidad que eran fibras 




Práctica: método de Willis (coproparasitoscópico)



1.*¿Qué aprendí?
En esta práctica puede aprender muchas cosas, desde una nueva técnica que llevamos a cabo, la cual en lo personal me pareció muy padre además de parecerme una técnica muy fácil de realizar una de las cuales es económicamente accesible a lo que yo puede observar, el hecho de estar en una especialidad como esta significa aprender muchas técnicas para poder diagnosticar enfermedades que posiblemente encontremos en nuestros pacientes, algo muy importante para así poder tratarlos y darles un buen tratamiento. Aprender a realizar esta técnica fue muy didáctico ya  que por primera vez el profesor nos puso un video donde especificaba todo el procedimiento a realizar, mismo que nos permitió no tener confusiones y así poder llevar a cabo correctamente toda nuestra práctica. Con esta práctica pude aprender que para todo tipo de  condiciones en las quenos encontremos siempre encontraremos alguna técnica que nos pueda ayudar a diagnosticar a nuestros pacientes, ya que como leíanteriormente sobre esta práctica, encontré que esta se es una de las practicas con lasque podemos diagnosticar a personas que viven encomunidades de lejana localización , ya que esta método te permite tener tu muestra ya preparadadurante varios meses y así poder ayudar a las personas a las que se les diagnostique alguna enfermedad, mismas que no tengan los recursos necesarios para poder trasladarse a un laboratorio, ya que este método es de los más indicados para realizarse en el campo y así poder trasladar tu muestra preparada sin tener ningún inconveniente.
Una de las cuestiones en torno a mi equipo de las cuales aprendí fue que cuando de verdad mis compañeras quieren trabajar, ellas ponen todo de su empeño y realizan muy correctamente todo, mismo que no se llevaría a cabo sin la organización con la que trabajamos en cada práctica, aunque a veces no nos organizamos bien, esta práctica fue todo lo contrario ya que tuvimos una excelente organización misma que nos ayudó a no tener dificultades en torno a la práctica realizada, además de que personalmente me sorprendí con el trabajo que realizamos como equipo ya que como ya lo había mencionado, en otras prácticas no nos habíamos organizado bien y por esa razón no terminábamos a tiempo pero con esta práctica me puede dar cuenta de que cuando en realidad si nos organizamos bien siempre podremos sacar adelante nuestro trabajo y de esa manera tener una práctica muy exitosa y a la vez realizándola muy velozmente obteniendo grandes y correctos resultados.


2.*¿Cómo lo hice?
Procedimiento:
1._Primeramente preparamos todo nuestro material así como recolectar nuestra muestra de heces fecales.

2)(Rodríguez,2014)



2._Lo primero que se realizo fue preparar la solución sobresaturada la cual empecé a preparar yo agregando en un vaso de precipitados agua de la llave vertiéndole poco a poco la sal, Karen la termino de preparar en lo que Miriam preparaba la solución que era con azúcar.
    2) (Rodríguez,2014)


3._Yo tome los 5g aproximadamente de heces fecales con una aplicador de madera y lo coloque en un vaso de precipitados, en ese momento yo agregue la solución de sal sobre las heces y las mezcle con el agitador.
3)(Rodríguez,2014) 

4._Mi compañera María José coloco en otro vaso de precipitados el embudo y encima unas gasas, en ese momento vertí las heces ya mezcladas mismas que se colaron con las gasas.




 4) (Rodríguez,2014)

5._Daniela lleno hasta el tope un tubo de ensayo y encima colocó un cubreobjetos para que prácticamente absorbiera lo de la parte de arriba del tubo y lo coloco en la esquina de un portaobjetos mismo que ya se había rotulado y se volvió a hacer la misma técnica pero con una gota de solución de lugol.
     
5)(Rodríguez,2014)
        
6._ Yo realice la misma técnica solo que en ese momento con la solución sobresaturada de azúcar, realizando todos los mismos pasos anteriores se colocaron otros dos cubreobjetos en otro porta mismo que igualmente ya estaba rotulado.

6)(Rodríguez,2014)

7._Se observaron los portaobjetos con la muestras preparadas mismos que  dieron negativo.



7) (Rodríguez,2014)

            
Por último reportamos nuestros resultados los cuales fueron los siguientes:
Laboratorio: “Barlosa RMP”
Nombre del paciente:
Edad: 16 años              Género: masculino
Tipo de muestra: Heces fecales
Técnica:
-Examen macroscópico:
Heces fecales con olor característico, de acuerdo a la escala de Bristol, heces de tipo 2color café marón.
-Examen microscópico:
Al paciente se le encontró con estado “negativo” respecto a la posibilidad de tener una parasitosis.

3.*¿Qué problemas tuve?
En el equipo no tuvimos ningún problema con la práctica ya que como tuvimos una buena organización en el equipo y yo como jefa del equipo repartí cada una de las actividades que iba a realizar cada una y de esa manera apurarnos sin dificultades, solo en la realización de la misma solo hubo problemas para conseguir nuestra muestra ya que mi compañera Pamela no la conseguía ya que ella tenía que recolectar la muestra para esa práctica y por eso nos atrasamos un poco.


4.*¿Cómo lo resolví?

El problema dela muestra, pues solo le dije a mi compañera Pamela que la consiguiera porque la necesitábamos en ese momento para nuestra practica pero finalmente si la pudimos conseguir y de esa manera poder realizar nuestra práctica.


Realización: 
Barcelos Cruz Lucía Goretti
Rodríguez Cruz Rosario Berenice